如何傳代貼壁細胞？

細胞在培養(yǎng)瓶長成致密單層后，已基本上飽和，為使細胞能繼續(xù)生長，同時也將細胞數(shù)量擴大，就必須進行傳代（再培養(yǎng)）。傳代培養(yǎng)也是一種將細胞種保存下去的方法。同時也是利用培養(yǎng)細胞進行各種實驗的必經(jīng)過程。懸浮型細胞直接分瓶就可以，而貼壁細胞需經(jīng)消化后才能分瓶。一般使用蛋白水解酶（比如胰蛋白酶）消化貼壁細胞成單個細胞，也可加入乙二胺四乙酸（EDTA）提高消化能力，EDTA 是一種二價離子的螯合劑，能抑制細胞膜上的Ca²⁺和Mg²⁺。常用的細胞消化液一般含有0.25%(w/v)的胰酶和0.03% (w/v) EDTA，一般用不含Ca²⁺和Mg²⁺的鹽溶液配置，先用胰酶-EDTA 消化液清洗細胞（5.0 -10.0 ml/75cm），然后棄去消化液，重新加入少量的胰酶-EDTA 消化液(2.0 to 5.0 ml/75 sq. cm flask) ，觀察細胞直到細胞變圓脫離瓶壁，此過程一般需要5-15分鐘，為了避免細胞成團，消化細胞的過程中不要拍打細胞瓶。對于特別難消化的細胞，可以加入胰酶EDTA 消化液后把細胞置于37°C 促進消化，細胞脫離瓶壁后，立刻加入含有血清的*培養(yǎng)基中止消化，血清中某些蛋白質(zhì)能夠抑制胰酶的活性。一般情況下，離心并不需要。如果細胞需要無血清或者低血清的培養(yǎng)基，可以以125000g 轉(zhuǎn)速離心5分鐘，然后棄去中止用的培養(yǎng)基，加入適合的新的培養(yǎng)基輕輕混勻細胞，移入到新的培養(yǎng)瓶。傳代的比例視細胞類型而定，一般是1:2-1:20，具體比例可參考說明書。胰蛋白酶會對某些細胞的細胞膜產(chǎn)生損傷，對于這種類型的細胞，可用細胞刮輕輕刮下細胞，加入適量的培養(yǎng)基，輕輕吹打混勻細胞，然后進行傳代培養(yǎng)。

傳代細胞的頻率多久較合適？

 傳代是指把細胞從一個培養(yǎng)瓶移到另一個培養(yǎng)瓶，傳代的間隔是指兩次傳代之間的時間。貼壁型的細胞的匯合度達到或者接近100%的時候，需進行傳代操作，但是，有些細胞以克隆的形式生長，匯合度永遠達不到100%，對于這種類型的細胞，細胞達到或者接近大密度的時候，就需傳代。接觸抑制型細胞（比如3T3）需要在細胞長滿之前傳代以避免產(chǎn)生細胞長滿后接觸抑制后產(chǎn)生性狀的改變。懸浮型的細胞必須在細胞達到大飽和密度之前傳代，懸浮細胞傳代時只需稀釋至合適的密度，讓細胞有充足的營養(yǎng)恢復到對數(shù)生長期。如果僅僅是簡單的換液，而且細胞數(shù)量不減少，細胞將會快速耗盡營養(yǎng)而死亡；如果細胞稀釋到低密度之下，細胞將會進入停滯期而不增殖或者死亡。不同的懸浮細胞的大飽和密度和傳代的間隔與比例是不同的，所以，培養(yǎng)懸浮細胞要每日觀察。

胰酶消化傳代的濃度是多少？是否含EDTA？濃度？

胰酶消化傳代的一般濃度為0.25%，部分細胞由于貼壁較緊，需要加0.53mM 的EDTA，如果做原代培養(yǎng)，胰酶的濃度需要做適當?shù)奶岣摺?/span>

細胞傳代消化時所用胰酶濃度越高越好嗎？

不見得！因為胰蛋白酶溶液的消化能力是和溶液的pH、溫度、胰酶濃度及溶液中是否含有Ca²⁺, Mg²⁺和血清等因素有關。通常情況下，pH 8.0 , 溫度 37 ℃ 其作用能力優(yōu)勢。另外，鈣、鎂離子及血清均能大大降低其消化能力。我們每次進行傳代消化前，一定要用D-Hanks液或PBS液反復沖洗細胞培養(yǎng)瓶，以便于將含血清的培養(yǎng)基沖洗干凈，這樣就能大大提高消化液的消化能力。通常使用的消化液濃度為：
（1）0.05％胰蛋白酶＋0.02％EDTA；
（2）0.25％胰蛋白酶＋0.03％EDTA。
（3）0.25% 胰蛋白酶
溶液pH8.0~9.0；使用D-Hank液配制。 
多數(shù)細胞傳代消化可使用0.05％胰蛋白酶＋0.02％EDTA這種消化液。  

能否使用細胞說明書上不同的培養(yǎng)基來培養(yǎng)細胞？

產(chǎn)品目錄或者細胞說明書上的推薦的培養(yǎng)基一般是細胞株的原始提供者推薦的培養(yǎng)基或者已經(jīng)經(jīng)過驗證的對該細胞株合適的培養(yǎng)基，細胞對未推薦的培養(yǎng)基也許會適應，也有可能不適應。對于更換培養(yǎng)基，應謹慎對待，更換培養(yǎng)基時，應留一瓶細胞使用推薦的培養(yǎng)基培養(yǎng)，留作種子。更換培養(yǎng)基有兩種方法，簡單的方法是直接更換培養(yǎng)基，強制使細胞適應新的培養(yǎng)基；還有一種更溫和的方法：傳代細胞的時候分成細胞兩瓶，一瓶使用原來推薦的培養(yǎng)基，第二瓶使用50%原來推薦的培養(yǎng)基，50%新的培養(yǎng)基，之后仔細觀察細胞的生長狀態(tài)，如果第二瓶細胞生長狀態(tài)不好，應立即停止更換培養(yǎng)基，如果第二瓶生長狀態(tài)好，可以繼續(xù)傳代分瓶，一瓶使用50%原來推薦的培養(yǎng)基，50%新的培養(yǎng)基，另一瓶使用25%原來推薦的培養(yǎng)基，75%新的培養(yǎng)基，繼續(xù)觀察，如果細胞狀態(tài)好，可以全部換成新鮮的培養(yǎng)基。
 
PS:
培養(yǎng)懸浮細胞，如何更換培養(yǎng)基？
如果空間足夠，只需添加適量的新鮮培養(yǎng)基，這是培養(yǎng)懸浮細胞時更換培養(yǎng)基的方法（少數(shù)細胞除外）；也可以通過離心（1000g / 5min）去除舊的培養(yǎng)基后，用新鮮的培養(yǎng)基輕輕地重懸細胞，移入培養(yǎng)瓶。